DNA載體可使目的基因在細胞內表達以達到我們的研究目的。

人工改造的 質粒是-常用的載體之一，通常具有以下幾個特點：

1. 有一個或多個限制性內切酶的切點，便于目的基因插入；

2. 帶有標記基因（抗性基因、熒光基因等），便于篩選；

3. 大小合適（一般小于10kb），便于轉染。

載體質粒示例：

MCS（multiple cloning site）：多克隆位點外源基因插入；

CMV啟動子（以及SV40、bla、T7、U6……）：高效率啟動基因表達；

SV40 polyA信號（以及TK polyA……)：轉錄終止，給mRNA添加polyA尾防降解；

neomycin/kanamycin resistance ORF 新霉素(G418) /卡那霉素抗性 (以及Ampicillin氨芐、puromycin嘌呤霉素……）：用于細菌轉化/細胞轉染后的篩選。
 

選擇限制性內切酶構建載體應注意：

1. 單酶切后載體容易自連必須去磷酸化， 不能保證插入片段的方向；

2. 雙酶切需要注意同尾酶的自連。

表達基因擴增的 引物設計：

1. NCBI Gene 數據庫查找基因cDNA序列；

2. 查找CDS區序列的酶切位點，對比載體上的酶切位點，避免沖突

3. CDS區首、尾序列+ 5’端加上酶切位點和（或） 保護堿基

表達載體構建 簡要流程

1. PCR擴增出基因CDS區，1400bp左右，膠回收；

2. 雙酶切膠回收產物及載體，膠回收；

3. 酶切后的產物用T4連接酶(Takara) 連接過夜，轉化，鑒定。

常見問題

1. 引物特異性不好，PCR雜帶太多或根本擴增不出來

在CDS區的上下游重新選擇引物，擴增成功后，以這個大一點的片段為模板擴增CDS區；

人基因ORF庫購買。

2. PCR產物酶切不成功

構建克隆載體，再酶切；

載體自連會使Lac Z編碼，在IPTG/X-Gal平板上呈現藍色。

3. 沒有合適的酶切位點

無縫克隆試劑盒。

4. 沒有合適的抗體

加上標簽，翻譯成融合蛋白，比如His、HA、Flag、Myc等，N端C端均可；

引物設計：CDS區序列，5’端依次加上標簽序列、酶切位點和（或）保護堿基；

載體自帶標簽，需要注意酶切位點處可能移碼。

點突變質粒

1. 使用高保真酶進行定點突變：PrimeSTAR Max DNA polymerase

PCR合成突變質粒，DpnI消化模板質粒，轉化培養，后續測序鑒定。

2. 使用無縫克隆連接進行定點突變：

PCR擴增出突變的線性化載體，無縫克隆連接成環狀質粒，轉化培養，后續測序鑒定。

原理提要

1. 切割區的選擇在于PAM序列-NGG；

2. 特異性在于sgRNA的20個堿基；

3. Cas9失活：D10A、H840A突變。

sgRNA設計

1. NGG序列前面，長度20nt左右；

2. GC含量在40-60%之間；

3. 盡量以G堿基開始，后7個堿基的靶向性要好；

4. 盡量靠近基因編碼區的ATG下游，第一或第二外顯子。

CRISPR/Cas9質粒的構建

1. 線性化載體；

2. sgRNA雙鏈結合；

3. sgRNA與載體連接；

4. 菌P鑒定。

基因敲除效果鑒定

1.Western檢測蛋白表達量；

2.雙sgRNA敲除，間隔200-500bp左右。鑒定引物設計在兩個gRNA外側。